Schmierläuse sind Insekten aus der Familie der Pseudococcidae , unbewehrte Schildläuse, die in feuchten, warmen Lebensräumen vorkommen. Von den über 2.000 beschriebenen Arten gelten viele als Schädlinge , da sie sich vom Pflanzensaft von Gewächshauspflanzen, Zimmerpflanzen und subtropischen Bäumen ernähren und zudem als Überträger verschiedener Pflanzenkrankheiten fungieren. Einige Ameisen leben in Symbiose mit ihnen, schützen sie vor Fressfeinden und ernähren sich vom Honigtau , den sie ausscheiden.

Beschreibung

Ein Video einer Wolllaus

Schmierläuse weisen einen Geschlechtsdimorphismus auf : Weibchen erscheinen als Nymphen mit reduzierter Morphologie und ohne Flügel, behalten aber im Gegensatz zu vielen anderen Schildlausarten oft Beine und können sich fortbewegen. Männchen sind kleiner, mückenartig und besitzen Flügel. Da Schmierläuse, wie alle anderen Schnabelkerfe (Hemiptera ), hemimetabol sind , durchlaufen sie keine vollständige Metamorphose im eigentlichen Sinne. Männliche Schmierläuse zeigen jedoch im Laufe ihres Lebenszyklus eine radikale Veränderung: Sie wandeln sich von flügellosen, eiförmigen Nymphen zu wespenartigen , flugfähigen Tieren.

Weibliche Schmierläuse ernähren sich vom Pflanzensaft, meist in Wurzeln oder anderen Spalten, seltener auch am Boden von gelagerten Früchten. Sie heften sich an die Pflanze und scheiden eine pudrige Wachsschicht aus (daher der Name „Schmierlaus“), die ihnen beim Saugen des Pflanzensafts Schutz bietet. Die Männchen leben nur kurz, da sie als ausgewachsene Tiere keine Nahrung aufnehmen und ausschließlich zur Befruchtung der Weibchen dienen. Männliche Zitrus-Schmierläuse fliegen zu den Weibchen und ähneln flauschigen Mücken .

Einige Arten von Schmierläusen legen ihre Eier in die gleiche Wachsschicht, die ihnen zum Schutz dient, und zwar in Mengen von 50 bis 100; andere Arten werden direkt vom Weibchen geboren.

Die bedeutendsten Schädlinge sind Schmierläuse, die sich von Zitrusfrüchten ernähren . Andere Arten schädigen Zuckerrohr , Weinreben , Ananas (Jahn et al. 2003), Kaffeebäume , Maniok , Farne , Kakteen , Gardenien , Papayas , Bananen , Maulbeeren , Sonnenblumen und Orchideen . Schmierläuse werden nur in Anwesenheit von Ameisen zu ernsthaften Schädlingen, da diese sie vor Fressfeinden und Parasiten schützen. [ 2 ] Schmierläuse sind außerdem Überträger von Viren in Weinreben und verbreiten das Weinrebenblattrollvirus und das Weinrebenrotfleckenvirus. [ 3 ]

Schmierläuse befallen auch einige fleischfressende Pflanzenarten wie beispielsweise Schlauchpflanzen ( Sarracenia ). In solchen Fällen ist eine Bekämpfung ohne wiederholte Insektizidanwendungen wie Diazinon schwierig . Geringer Befall verursacht möglicherweise keine nennenswerten Schäden. Bei stärkerem Befall kann es jedoch zu Blattfall kommen. In den letzten Jahren haben sich einige Schmierlausarten in einigen Gebieten zu invasiven Schädlingen entwickelt und stellen ein großes Problem für die neu entstandenen Agrarökosysteme dar . In Indien wurde die Schlafmohnpflanze ( Withania somnifera) als neuer Wirt für die invasive Schmierlausart Phenacoccus solenopsis identifiziert . [ 4 ]

Einige Schmierläuse der Gattung Hypogeococcus werden in Südafrika zur biologischen Schädlingsbekämpfung invasiver Kakteen eingesetzt , darunter Harrisia balansae , H. martinii und Opuntia cespitosa . [ 5 ]

Fossilien von Ameisen der Gattung Acropyga wurden in dominikanischen Bernsteinablagerungen aus dem Burdigalium gefunden . Einige Individuen tragen die ausgestorbene Schmierlausgattung Electromyrmococcus . [ 6 ] Diese Fossilien stellen den ältesten Nachweis der Symbiose zwischen Schmierläusen und Ameisen der Gattung Acropyga dar. [ 6 ]

Kontrollmethoden

Zur Bekämpfung wurden Insektizide wie Pyrethroide ( z. B. Permethrin , Bifenthrin , Cyfluthrin ) eingesetzt, [ 7 ] doch wird dieser Ansatz aufgrund der Sterblichkeit natürlicher Feinde der Schmierlaus oft als kontraproduktiv angesehen .

Manche Gärtner nutzen räuberische Käferarten ( z. B. Cryptolaemus ) und Florfliegenlarven ( Chrysopidae ) zur Bekämpfung von Schmierlausbefall, da die Florfliegenlarven gefräßige Fressfeinde von Blattläusen und anderen kleinen Insekten sind. [ 8 ]

Stoffwechsel

Schmierläuse besitzen einen hochkomplexen Stoffwechsel, der nicht nur einen, sondern zwei bakterielle Endosymbionten umfasst , die sich im Inneren des jeweils anderen befinden. Die Endosymbionten produzieren essentielle Aminosäuren, die die Schmierlaus nicht direkt über ihre Nahrung aufnehmen kann. Genetisch gesehen sind Schmierläuse auf ein komplexes Netzwerk von Stoffwechselwegen angewiesen, in denen Proteine ​​über Membranen zwischen ehemals unabhängigen Organismen transportiert werden. [ 9 ]

Verwendung in der Textilindustrie

In Oaxaca, Mexiko, wo Schmierläuse als Cochinilla algodonosa bekannt sind, werden die Insekten gezielt gezüchtet. Getrocknete Schmierläuse werden zu Pulver vermahlen, woraus ein roter Farbstoff gewonnen wird , der zum Färben von Stoffen, in Künstlerfarben und in Kosmetika verwendet wird.

Beachten Sie, dass Cochenille-Schildläuse zwar häufig als Schmierläuse bezeichnet werden und ihnen ein sehr ähnliches Aussehen und eine ähnliche Größe zugeschrieben werden, Schmierläuse (Pseudococcidae) jedoch einer anderen Familie angehören als Cochenille-Schildläuse (Dactylopiidae), von denen es mehrere Arten gibt.

  • Feigenkaktus mit Wollläusen
    Feigenkaktus mit Wollläusen
  • Wollläuse auf Feigenkaktusblättern
    Wollläuse auf Feigenkaktusblättern
  • Wollläuse werden in Oaxaca, Mexiko, zu traditionellem rotem Farbstoff vermahlen.
    Wollläuse werden in Oaxaca, Mexiko, zu traditionellem rotem Farbstoff vermahlen.

Genera

Folgende Einträge sind in BioLib.cz enthalten : [ 10 ]

  1. Acaciacoccus Williams & Matile-Ferrero, 1994
  2. Acinicoccus Williams, 1985
  3. Acrochordonus Cox, 1987
  4. Adelosoma Borchsenius, 1948
  5. Aemulantonina Williams, 2004
  6. Agastococcus Cox, 1987
  7. Albertinia de Lotto, 1971
  8. Allococcus Ezzat & McConnell, 1956
  9. Allomyrmococcus Takahashi, 1941
  10. Allotrionymus Takahashi, 1958
  11. Amonostherium Morrison & Morrison, 1922
  12. Anaparaputo Borchsenius, 1962
  13. Anisococcus Ferris, 1950
  14. Annulococcus James, 1936
  15. Anthelococcus McKenzie, 1964
  16. Antonina Signoret, 1875
  17. Antoninella Kiritchenko, 1938
  18. Antoninoides Ferris, 1953
  19. Apodastococcus Williams, 1985
  20. Archeomyrmococcus Williams, 2002
  21. Artemicoccus Balachowsky, 1953
  22. Asaphococcus Cox, 1987
  23. Asphodelococcus Morrison, 1945
  24. Asteliacoccus Williams, 1985
  25. Atriplicicoccus Williams & Granara de Willink, 1992
  26. Atrococcus Goux, 1941
  27. Australicoccus Williams, 1985
  28. Australiputo Williams, 1985
  29. Balachowskya Gomez-Menor, 1956
  30. Balanococcus Williams, 1962
  31. Benedictycoccina Kozár & Foldi, 2004
  32. Bessenayla Goux, 1988
  33. Birendracoccus Ali, 1975
  34. Bolbococcus Williams, 2002
  35. Boninococcus Kawai, 1973
  36. Boreococcus Danzig, 1960
  37. Borneococcus Williams, 2002
  38. Bouhelia Balachowsky, 1938
  39. Brevennia Goux, 1940
  40. Brevicoccus Hambleton, 1946
  41. Calicoccus Balachowsky, 1959
  42. Callitricoccus Williams, 1985
  43. Calyptococcus Borchsenius, 1948
  44. Cannococcus Borchsenius, 1960
  45. Casuarinaloma Froggatt, 1933
  46. Cataenococcus Ferris, 1955
  47. Caulococcus Borchsenius, 1960
  48. Chaetococcus Maskell, 1898
  49. Chaetotrionymus Williams, 1985
  50. Chloeoon Anderson, 1788
  51. Chlorizococcus McKenzie, 1960 [ 11 ]
  52. Chlorococcus Beardsley, 1971
  53. Chryseococcus Cox, 1987
  54. Cintococcus Goux, 1940
  55. Um 1962
  56. Clavicoccus Ferris, 1948
  57. Coccidella Hambleton, 1946
  58. Coccidohystrix Lindinger, 1943
  59. Coccura Šulc, 1908
  60. Coleococcus Borchsenius, 1962
  61. Conicoccus Goux, 1994
  62. Conicosoma de Lotto, 1971
  63. Conulicoccus Williams, 1985
  64. Coorongia Williams, 1985
  65. Cormiococcus Williams, 1989
  66. Crenicoccus Williams, 2004
  67. Criniticoccus Williams, 1960
  68. Crisicoccus Ferris, 1950
  69. Crocydococcus Cox, 1987
  70. Cryptoripersia Cockerell, 1899
  71. Cucullococcus Ferris, 1941
  72. Cyperia De Lotto, 1964
  73. Cypericoccus Williams, 1985
  74. Cyphonococcus Cox, 1987
  75. Dawa Williams, 1985
  76. Delococcus Ferris, 1955
  77. Delottococcus Cox & Ben-Dov, 1986
  78. Dicranococcus Williams, 2002
  79. Discococcus Ferris, 1953
  80. Distichlicoccus Ferris, 1950
  81. Diversicrus de Lotto, 1971
  82. Doryphorococcus Williams, 2002
  83. Drymococcus Borchsenius, 1962
  84. Dysmicoccus Ferris, 1950
  85. Eastia De Lotto, 1964
  86. Ehrhornia Ferris, 1918
  87. Epicoccus Cockerell, 1902
  88. Eriocorys de Lotto, 1967
  89. Erioides Green, 1922
  90. Erium Cockerell, 1897
  91. Eucalyptococcus Williams, 1985
  92. Eumirococcus Ter-Grigorian, 1964
  93. Eumyrmococcus Silvestri, 1926
  94. Eupeliococcus Sãvescu, 1985
  95. Euripersia Borchsenius, 1948
  96. Eurycoccus Ferris, 1950
  97. Exallomochlus Williams, 2004
  98. Exilipedronia Williams, 1960
  99. Extanticoccus Williams, 2004
  100. Farinococcus Morrison, 1922
  101. Ferrisia Fullaway, 1923
  102. Ferrisicoccus Ezzat & McConnell, 1956
  103. Fijicoccus Williams & Watson, 1988
  104. Fonscolombia Lichtenstein, 1877
  105. Formicococcus Takahashi, 1928
  106. Gallulacoccus Beardsley, 1971
  107. Geococcus Green, 1902
  108. Glycycnyza Danzig, 1974
  109. Gouxia Koçak & Kemal, 2009 [ a ]
  110. Gomezmenoricoccus Kozar & Walter, 1985
  111. Greenoripersia Bodenheimer, 1929
  112. Grewiacoccus Brain, 1918
  113. Grewiacococcus Brain, 1918
  114. Hadrococcus Williams, 1985
  115. Hambletonrhizoecus Kozár & Konczné Benedicty, 2005
  116. Heliococcus Šulc, 1912
  117. Hemisphaerococcus Borchsenius, 1934
  118. Heterococcopsis Borchsenius, 1948
  119. Heterococcus Ferris, 1918
  120. Hippeococcus Reyne, 1954
  121. Hopefoldia Foldi, 1988
  122. Hordeolicoccus Williams, 2004
  123. Humoccus Ferris, 1953
  124. Humococcus Ferris, 1953
  125. Hypogeococcus Rau, 1938 [ 5 ]
  126. Iberococcus Gomez-Menor Ortega, 1928
  127. Idiococcus Takahashi & Kanda, 1939
  128. Inopicoccus Danzig, 1971
  129. Ityococcus Williams, 1985
  130. Kaicoccus Takahashi, 1958
  131. Kenmorea Williams, 1985
  132. Kermicus Newstead, 1897
  133. Kiritshenkella Borchsenius, 1948
  134. Lachnodiella Hempel, 1910
  135. Lachnodiopsis Borchsenius, 1960
  136. Lacombia Goux, 1940
  137. Laingiococcus Morrison, 1945
  138. Laminicoccus Williams, 1960
  139. Lanceacoccus Williams, 2004
  140. Lantanacoccus Williams & Granara de Willink, 1992
  141. Lenania De Lotto, 1964
  142. Leococcus Kanda, 1959
  143. Leptococcus Reyne, 1961
  144. Leptorhizoecus Williams, 1998
  145. Liucoccus Borchsenius, 1960
  146. Lomatococcus Borchsenius, 1960
  147. Londiania De Lotto, 1964
  148. Longicoccus Danzig, 1975
  149. Maconellicoccus Ezzat, 1958
  150. Macrocepicoccus Morrison, 1919
  151. Macrocerococcus Leonardi, 1907
  152. Maculicoccus Williams, 1960
  153. Madacanthococcus Mamet, 1959
  154. Madagaskar Mamet, 1962
  155. Madangiacoccus Williams, 1985
  156. Madeurycoccus Mamet, 1959
  157. Malaicoccus Takahashi, 1950
  158. Malekoccus Matile-Ferrero, 1988
  159. Mammicoccus Balachowsky, 1959
  160. Marendelea de Lotto, 1967
  161. Mascarenococcus Mamet, 1940
  162. Maskellococcus Cox, 1987
  163. Mediococcus Kiritschenko, 1936
  164. Melanococcus Williams, 1985
  165. Metadenopsis Matesova, 1966
  166. Metadenopus Sulc, 1933
  167. Miconicoccus Williams & Miller, 1999
  168. Mirococcopsis Borchsenius, 1948
  169. Mirococcus Borchsenius, 1947
  170. Miscanthicoccus Takahashi, 1958
  171. Misericoccus Ferris, 1953
  172. Mollicoccus Williams, 1960
  173. Mombasinia De Lotto, 1964
  174. Moystonia Williams, 1985
  175. Mutabilicoccus Williams, 1960
  176. Naiacoccus Green, 1919
  177. Nairobia De Lotto, 1964
  178. Natalensia Brain, 1915
  179. Neochavesia Williams & de Willink, 1992
  180. Neoclavicoccus Cohic, 1959
  181. Neorhizoecus Hambleton, 1916
  182. Neoripersia Kanda, 1943
  183. Neosimmondsia Laing, 1930
  184. Neotrionymus Borchsenius, 1948
  185. Nesococcus Ehrhorn, 1916
  186. Nesopedronia Beardsley, 1971
  187. Nesticoccus Tang, 1977
  188. Nipaecoccus Šulc, 1945
  189. Octococcus Hall, 1939
  190. Odacoccus Williams & Watson, 1988
  191. Ohiacoccus Beardsley, 1971
  192. Oracella Ferris, 1950
  193. Orstomicoccus Mamet, 1962
  194. Oudablis Signoret, 1882
  195. Oxyacanthus Chevallier, 1836
  196. Palaucoccus Beardsley, 1966
  197. Palmicultor Williams, 1963
  198. Paludicoccus Ferris, 1918
  199. Pandanicola Beardsley, 1966
  200. Papuacoccus Williams & Watson, 1988
  201. Paracoccus Ezzat & McConnell, 1956
  202. Paradiscococcus Williams, 1985
  203. Paradoxococcus McKenzie, 1962
  204. Paraferrisia Williams & de Boer, 1973
  205. Paramococcus Foldi & Cox, 1989
  206. Paramonostherium Williams, 1985
  207. Paramyrmococcus Takahashi, 1941
  208. Parapaludicoccus Mamet, 1962
  209. Parapedronia Balachowsky, 1953
  210. Paraputo Laing, 1929
  211. Pararhodania Ter-Grigorian, 1964
  212. Paratrionymus Borchsenius, 1948
  213. Pedrococcus Mamet, 1942
  214. Pedronia Green, 1922
  215. Peliococcopsis Borchesenius, 1948
  216. Peliococcus Borchsenius, 1948
  217. Pellizzaricoccus Kozar, 1991
  218. Penthococcus Danzig, 1972
  219. Peridiococcus Williams, 1985
  220. Perystrix Gavrilov, 2004
  221. Phenacoccopsis Borchsenius, 1948
  222. Phenacoccus Cockerell, 1893
  223. Pilococcus Takahashi, 1928
  224. Planococcoides Ezzat & McConnell, 1956
  225. Planococcus Ferris, 1950
  226. Pleistocerarius Matile-Ferrero, 1970
  227. Plotococcus Miller & Denno, 1977
  228. Poecilococcus Brookes, 1981
  229. Polystomophora Borchsenius, 1948
  230. Porococcus Cockerell, 1898
  231. Promyrmococcus Williams, 2002
  232. Prorhizoecus Miller & McKenzie, 1971
  233. Prorsococcus Williams, 1985
  234. Pseudantonina Green, 1922
  235. Pseudococcus Westwood, 1840
  236. Pseudorhizoecus Green, 1933
  237. Pseudorhodania Borchsenius, 1962
  238. Pseudoripersia Cockerell, 1899
  239. Pseudotrionymus Beardsley, 1971
  240. Pygmaeococcus McKenzie, 1960
  241. Quadrigallicoccus Williams & Miller, 1999
  242. Radicoccus Hambleton, 1946
  243. Rastrococcus Ferris, 1954
  244. Renicaula Cox, 1987
  245. Rhizoecus Künckel d'Herculais, 1878
  246. Rhodania Goux, 1935
  247. Ripersia Signoret, 1875
  248. Ritsemia Lichtenstein, 1879
  249. Saccharicoccus Ferris, 1950
  250. Saliococcus Kanda, 1934
  251. Sarococcus Williams & de Boer, 1973
  252. Scaptococcus McKenzie, 1964
  253. Seabrina Neves, 1943
  254. Serrolecanium Shinji, 1935
  255. Seyneria Goux, 1990
  256. Sinococcus Wu & Zheng, 2001
  257. Spartinacoccus Kosztarab, 1996
  258. Sphaerococcus Maskell, 1892
  259. Spilococcus Ferris, 1950
  260. Stachycoccus Borchsenius, 1962
  261. Stemmatomerinx Ferris, 1950
  262. Stipacoccus Tang, 1992
  263. Strandanna De Lotto, 1969
  264. Strombococcus Williams, 1985
  265. Synacanthococcus Morrison, 1920
  266. Syrmococcus Ferris, 1953
  267. Takahashicoccus Kanda, 1959
  268. Tasmanicoccus Williams, 1985
  269. Thaimyrmococcus Williams, 2002
  270. Tomentocera Beardsley, 1964
  271. Trabutina Marchal, 1904
  272. Trabutinella Borchsenius, 1948
  273. Trechocorys Curtis, 1843
  274. Tridiscus Ferris, 1950
  275. Trimerococcus Balachowsky, 1952
  276. Trionymus Berg, 1899
  277. Trochiscococcus Williams & Pellizzari, 1997
  278. Tylococcus Newstead, 1897
  279. Tympanococcus Williams, 1967
  280. Ventrispina Williams, 1985
  281. Villosicoccus Williams, 1985
  282. Volvicoccus Goux, 1945
  283. Vryburgia De Lotto, 1967
  284. Xenococcus Silvestri, 1924
  285. Yudnapinna Williams, 1985

Ausgestorbene Gattungen:

Notiz :

  1. ^ Synonym von Giraudia : monotypische Gouxia danielaferreroae (Goux, 1989) .

Referenzen

  1. ^ "Pseudococcidae Heymons, 1915" . Integriertes Taxonomisches Informationssystem .
  2. ^ Noe, Ronald (21. November 2012). „Feuerameisen schützen Schmierläuse vor ihren natürlichen Feinden, indem sie die von der Blattwicklerart Sylepta derogata gebauten Blattunterstände nutzen . “ PLOS ONE . 7 (11) e49982. US National Library of Medicine National Institutes of Health. Bibcode : 2012PLoSO...749982Z . doi : 10.1371 / journal.pone.0049982 . PMC 3503828. PMID 23185505 .  
  3. ^ Bettiga, Larry J. (8. September 2015). „Bewertung der Auswirkungen der Blattroll- und Rotfleckenkrankheit der Weinrebe in lokalen Weinbergen“ . ANR Blogs . Landwirtschaft im Salinas Valley . Abgerufen am 23. Dezember 2022 .
  4. ^ Sharma, A.; Pati, PK (2013). „Erste Aufzeichnung von Ashwagandha als neuer Wirt der invasiven Schmierlaus ( Phenacoccus solenopsis Tinsley) in Indien“. Entomologische Nachrichten . 123 (1): 59–62 . doi : 10.3157/021.123.0114 . S2CID 85645762 . 
  5. ^ a b „Kaktusbekämpfung in der Kleinen Karoo“ . Rhodes University . 17.09.2014 . Abgerufen am 19.04.2021 .
  6. ^ a b Johnson, MS; et al. (2001). „ Acropyga- und Azteca- Ameisen (Hymenoptera: Formicidae) mit Schildläusen (Sternorrhyncha: Coccoidea): 20 Millionen Jahre inniger Symbiose“ . American Museum Novitates (3335): 1–18 . doi : 10.1206/0003-0082(2001)335<0001:AAAAHF>2.0.CO;2 . S2CID 55067700 . 
  7. ^ SP290-S-Schmierläuse an Zierpflanzen (Bericht). Landwirtschaftlicher Beratungsdienst der Universität Tennessee. 2003. SP290S-1.5M-5/03(Rev) E12-4615-00-030-03.
  8. ^ „Cryptolaemus und Florfliegen zur Bekämpfung von Schmierläusen und Schildläusen“ (PDF) . Department of Primary Studies, NSW . New South Wales . Abgerufen am 25. Mai 2021 .
  9. ^ Callier, Viviane (8. Juni 2022). „Mitochondrien und der Ursprung der Eukaryoten“ . Knowable Magazine . doi : 10.1146/knowable-060822-2 . Abgerufen am 18. August 2022 .
  10. ^ BioLib.cz: Familie: Schmierläuse - Pseudococcidae Heymons, 1915 (abgerufen am 14. Mai 2024)
  11. ^ GBIF Chorizococcus McKenzie, 1960

Weiterführende Literatur

  • Jahn, GC und JW Beardsley (1994). „Großkopfameisen, Pheidole megacephala : Störung der biologischen Bekämpfung der Grauen Ananas-Schmierlaus“. In: DF Williams [Hrsg.] Exotische Ameisen: Biologie, Auswirkungen und Bekämpfung eingeschleppter Arten . Boulder, Col.: Westview Press, S. 199–205. ISBN 9780813386157Die
  • Jahn, GC und JW Beardsley (1998). „Anwesenheits-/Abwesenheitsuntersuchungen von Schmierläusen, Ameisen und wichtigen Prädatoren in Ananas“. J. Plant Protection in the Tropics 11(1):73–79.
  • Jahn, Gary C., JW Beardsley und H. González-Hernández (2003). „Eine Übersicht über den Zusammenhang von Ameisen mit der Schmierlauswelkekrankheit der Ananas“ . Proceedings of the Hawaiian Entomological Society . 36:9–28.