Replikase-Polyprotein
Kennungen
OrganismusSARS-CoV-2
SymbolRep
UniProtP0DTD1
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StrukturenSchweizer Modell
DomänenInterPro

ORF1ab (auch ORF1a/b ) bezeichnet zusammenfassend zwei offene Leserahmen (ORFs), ORF1a und ORF1b , die in den Genomen von Nidoviren , einer Gruppe von Viren, zu der auch Coronaviren gehören, konserviert sind . Die Gene exprimieren große Polyproteine , die durch Proteolyse in verschiedene nichtstrukturelle Proteine ​​mit unterschiedlichen Funktionen im viralen Lebenszyklus gespalten werden , darunter Proteasen und Komponenten des Replikase-Transkriptase-Komplexes (RTC). [ 1 ] [ 2 ] [ 3 ] Zusammen werden die beiden ORFs manchmal als Replikasegen bezeichnet . [ 4 ] Sie sind durch eine programmierte ribosomale Leserasterverschiebung miteinander verbunden , die es dem Ribosom ermöglicht, die Translation über das Stoppcodon am Ende von ORF1a hinaus in einem -1- Leserahmen fortzusetzen . Die resultierenden Polyproteine ​​sind als pp1a und pp1ab bekannt . [ 1 ] [ 2 ] [ 3 ] [ 4 ]

Ausdruck

Genomische Informationen
Genomische Organisation des Isolats Wuhan-Hu-1, der frühesten sequenzierten Probe von SARS-CoV-2, mit Angabe der Position von ORF1a und ORF1b
Genomgröße29.903 Basen
Jahr der Fertigstellung2020
UCSC Genome Browser Assembly-IDwuhCor1

ORF1a ist der erste offene Leserahmen am 5'-Ende des Genoms. ORF1ab nimmt zusammen etwa zwei Drittel des Genoms ein, während das verbleibende Drittel am 3'-Ende die Struktur- und Hilfsproteine ​​kodiert . [ 1 ] [ 2 ] [ 3 ] Die Translation erfolgt durch cap-abhängige Translation von einer 5'-cap-modifizierten RNA . [ 1 ] Nidoviren verfügen über ein komplexes System zur diskontinuierlichen Produktion subgenomischer RNA , um die Expression von Genen in ihren relativ großen RNA-Genomen (typischerweise 27–32 kb bei Coronaviren [ 1 ] ) zu ermöglichen. ORF1ab wird jedoch direkt von der genomischen RNA translatiert. [ 5 ] ORF1ab-Sequenzen wurden in nicht-kanonischen subgenomischen RNAs beobachtet, ihre funktionelle Bedeutung ist jedoch unklar. [ 5 ]

Eine programmierte ribosomale Leserasterverschiebung ermöglicht das Überlesen des Stoppcodons , das ORF1a beendet, und die Fortsetzung der Translation in einem -1- Leseraster , wodurch das längere Polyprotein pp1ab entsteht. Die Leserasterverschiebung erfolgt an einer schwer zugänglichen Sequenz , an die eine Pseudoknoten -RNA-Sekundärstruktur anschließt . [ 1 ] Die Effizienz dieser Verschiebung wurde für das murine Coronavirus mit 20–50 % [ 6 ] bzw. für SARS-CoV-2 mit 45–70 % [ 7 ] gemessen , was zu einer Stöchiometrie von etwa 1,5- bis 2-mal so viel exprimiertem pp1a- wie pp1ab-Protein führt. [ 2 ]

Verarbeitung

Oben: Organisation des Coronavirus-Genoms mit Darstellung der nichtstrukturellen Proteine ​​in ORF1a und ORF1b. Mitte: Domänenorganisation von nsp14 ( Exonuklease und Methyltransferase ). Unten: Komponenten des Coronavirus -Replikase-Transkriptase-Komplexes . [ 8 ]

Die Polyproteine ​​pp1a und pp1ab enthalten etwa 13 bis 17 nichtstrukturelle Proteine . [ 3 ] Durch die Wirkung interner Cysteinproteasedomänen werden diese Proteine ​​mittels Autoproteolyse freigesetzt . [ 1 ] [ 2 ] [ 3 ]

Coronaviren besitzen insgesamt 16 nichtstrukturelle Proteine. Das pp1a-Protein enthält die nichtstrukturellen Proteine ​​nsp1–11, das pp1ab-Protein die Proteine ​​nsp1–10 und nsp12–16. Die proteolytische Prozessierung erfolgt durch zwei Proteasen: Die Papain-ähnliche Proteasedomäne des Multidomänenproteins nsp3 spaltet bis zu nsp4, während die 3CL-Protease (auch als Hauptprotease nsp5 bekannt) die restlichen Spaltungen von nsp5 bis zum C-Terminus des Polyproteins durchführt . [ 1 ] [ 2 ] Die Proteine ​​nsp12–16, die C-terminalen Komponenten des pp1ab-Polyproteins, enthalten die für die Virusreplikation notwendigen enzymatischen Kernaktivitäten . [ 1 ] Nach der proteolytischen Prozessierung lagern sich mehrere nichtstrukturelle Proteine ​​zu einem großen Proteinkomplex zusammen , dem Replikase-Transkriptase-Komplex (RTC), der die Genomreplikation und Transkription durchführt . [ 1 ] [ 2 ]

Komponenten

Kernreplikasedomänen

Phylogenetische Beziehungen zwischen Nidoviren und ihrer pp1ab- Proteindomänenorganisation , wobei konservierte Domänen hervorgehoben sind. NendoU repräsentiert die Endoribonuklease und 3CLpro die wichtigste 3C-ähnliche Protease . [ 4 ]

Alle Nidovirus-Linien ( Arteriviren , Mesoniviren , Roniviren und Coronaviren ) besitzen fünf konservierte Domänen des „Kernreplikase“ -Proteins : ORF1a enthält die Hauptprotease , die an beiden Enden von Transmembrandomänen flankiert wird ; ORF1b enthält eine Nukleotidyltransferase- Domäne ( NiRAN) , eine RNA-abhängige RNA-Polymerase (RdRp), eine Zinkbindungsdomäne und eine Helikase . [ 3 ] [ 9 ] (Manchmal werden die Transmembranregionen separat gezählt und als sieben Domänen betrachtet. [ 4 ] ) Zusätzlich findet sich in allen Nidoviren, die Wirbeltiere infizieren, eine Endoribonuklease- Domäne . Arteriviren, die kleinere Genome als die anderen Nidovirus-Linien besitzen, weisen zudem einen Mangel an Methyltransferasen sowie an einer Korrekturlese- Exoribonuklease auf – einer Domäne, die bei Nidoviren mit größeren Genomen konserviert ist. [ 3 ] Diese Korrekturlesefunktion ist vermutlich für die ausreichende Genauigkeit bei der Replikation großer RNA-Genome erforderlich, könnte aber bei einigen Viren auch weitere Funktionen erfüllen. [ 9 ]

Coronaviren

Bei Coronaviren enthalten pp1a und pp1ab zusammen sechzehn nichtstrukturelle Proteine, die folgende Funktionen haben: [ 1 ] [ 2 ] [ 10 ] [ 11 ]

Nichtstrukturelle Proteine, die von den Coronavirus-Proteinen pp1a und pp1ab abgeleitet sind
Nichtstrukturelles ProteinFunktion
nichtstrukturelles Protein 1Zellulärer mRNA- Abbau, Hemmung der Wirtszell -Translation, Interferon -Hemmung; nicht vorhanden bei Gammacoronavirus
nichtstrukturelles Protein 2Unbekannt; bindet Prohibitin
nichtstrukturelles Protein 3Multidomänenprotein mit einer oder zwei Papain-ähnlichen Proteasedomänen zur Polyproteinverarbeitung; Interferon-Antagonist; zahlreiche weitere Funktionen
nichtstrukturelles Protein 4Doppelmembranvesikelbildung​​
nichtstrukturelles Protein 53CL-Protease zur Polyproteinverarbeitung; Interferonhemmung
nichtstrukturelles Protein 6Doppelmembranvesikelbildung​​
nichtstrukturelles Protein 7Kofaktor und Prozessivitätsfaktor für RdRp ; bildet einen Komplex mit nsp8 und nsp12
nichtstrukturelles Protein 8Cofactor and processivity factor for RdRp; forms complex with nsp7 and nsp12
nonstructural protein 9Single-stranded RNA binding
nonstructural protein 10Cofactor for nsp14 and nsp16
nonstructural protein 11Unknown
nonstructural protein 12RNA-dependent RNA polymerase (RdRp) and nucleotidyltransferase
nonstructural protein 13Helicase and RNA triphosphatase
nonstructural protein 14Proofreading exonuclease, RNA cap formation, guanosine N7-methyltransferase
nonstructural protein 15Endoribonuclease, immune evasion function
nonstructural protein 16Ribose 2'-O-methyltransferase, RNA cap formation

Evolution

The structure and organization of the genome, including ORF1a, ORF1b, and the frameshift separating them, is conserved among nidoviruses. Some "non-canonical" nidovirus structures have been described, mainly involving gene fusions.[4] The largest known nidovirus, planarian secretory cell nidovirus (PSCNV), with a 41kb genome, has a non-canonical genome structure in which ORF1a, ORF1b, and downstream ORFs containing structural proteins are fused and expressed as a single large ORF encoding a polyprotein of over 13,000 amino acids.[4][12] In these non-canonical genomes, other frameshift locations or stop codon readthrough may be used to regulate the stoichiometry of viral proteins.[4]

Nidoviruses vary widely in genome size, from arteriviruses with typically 12-15kb genomes to coronaviruses at 27-32kb. Their evolutionary history has been of research interest in understanding the replication of very large RNA genomes despite the relatively low-fidelity replication mechanism of the viral RNA-dependent RNA polymerase (RdRp).[4] The larger nidovirus genomes (above around 20kb[3]) encode a proofreading exoribonuclease (nsp14 in coronaviruses) thought to be required for replication fidelity.[9][1]

Unter den Coronaviren ist ORF1ab stärker konserviert als die 3'-ORFs, die für Strukturproteine ​​kodieren . [ 11 ] Während der COVID-19-Pandemie wurde das Genom von SARS-CoV-2- Viren vielfach sequenziert , wodurch Tausende verschiedener Varianten identifiziert wurden . Laut einer Analyse der Weltgesundheitsorganisation (WHO) vom Juli 2020 war ORF1ab das am häufigsten mutierte Gen, gefolgt vom S-Gen, das für das Spike-Protein kodiert . Das am häufigsten mutierte Protein innerhalb von ORF1ab war die Papain-ähnliche Protease (nsp3), und die am häufigsten beobachtete Missense-Mutation betraf die RNA-abhängige RNA-Polymerase . [ 13 ] Einige PCR- Tests zum Nachweis von COVID-19 analysieren die Probe unter anderem auf das ORF1ab-Gen. [ 14 ]

Referenzen

  1. Hartenian E , Nandakumar D , Lari A , Ly M, Tucker JM, Glaunsinger BA (September 2020). „ Die molekulare Virologie von Coronaviren“ . The Journal of Biological Chemistry . 295 ( 37 ): 12910–12934 . doi : 10.1074 / jbc.REV120.013930 . PMC 7489918. PMID 32661197 .  
  2. V'kovski P, Kratzel A, Steiner S, Stalder H, Thiel V (März 2021). „ Coronavirus - Biologie und -Replikation: Implikationen für SARS-CoV-2“ . Nature Reviews Microbiology. 19 ( 3 ): 155–170 . doi : 10.1038/s41579-020-00468-6 . PMC 7592455. PMID 33116300 .  
  3. Posthuma CC , Te Velthuis AJ, Snijder EJ (April 2017). „ Nidovirus - RNA - Polymerasen: Komplexe Enzyme für außergewöhnliche RNA-Genome “ . Virus Research . 234 : 58–73 . doi : 10.1016 / j.virusres.2017.01.023 . PMC 7114556. PMID 28174054 .  
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  5. ^ a b Wang D, Jiang A, Feng J, Li G, Guo D, Sajid M, et al. (Mai 2021). „Die SARS-CoV-2-Subgenomlandschaft und ihre neuartigen regulatorischen Merkmale“ . Molekulare Zelle . 81 (10): 2135–2147.e5. doi : 10.1016/j.molcel.2021.02.036 . PMC 7927579 . PMID 33713597 .  
  6. ^ Irigoyen N, Firth AE, Jones JD, Chung BY, Siddell SG, Brierley I (Februar 2016). „Hochauflösende Analyse der Coronavirus-Genexpression mittels RNA-Sequenzierung und Ribosomenprofilierung“ . PLOS Pathogens . 12 (2) e1005473. doi : 10.1371/journal.ppat.1005473 . PMC 4769073. PMID 26919232 .  
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  9. Ogando NS , Ferron F, Decroly E, Canard B, Posthuma CC, Snijder EJ (7. August 2019). „ Der kuriose Fall der Nidovirus- Exoribonuklease : Ihre Rolle bei der RNA- Synthese und Replikationsgenauigkeit“ . Frontiers in Microbiology . 10 : 1813. doi : 10.3389/fmicb.2019.01813 . PMC 6693484. PMID 31440227 .  
  10. ^ Rohaim MA, El Naggar RF, Clayton E, Munir M (Januar 2021). „Strukturelle und funktionelle Einblicke in nicht -strukturelle Proteine ​​von Coronaviren“ . Microbial Pathogenesis . 150 104641. doi : 10.1016/j.micpath.2020.104641 . PMC 7682334. PMID 33242646 .  
  11. ^ a b Chen Y, Liu Q, Guo D (April 2020). „Emerging coronaviruses: Genome structure, replication, and pathogenesis“ . Journal of Medical Virology . 92 (4): 418–423 . doi : 10.1002/jmv.25681 . PMC 7167049. PMID 31967327 .  
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  13. ^ Koyama T, Platt D, Parida L (Juli 2020). „Variantenanalyse von SARS-CoV-2-Genomen“ . Bulletin der Weltgesundheitsorganisation . 98 (7): 495–504 . doi : 10.2471/BLT.20.253591 . PMC 7375210. PMID 32742035 .  
  14. ^ Richardson, Robin (22. August 2021). „Open Wide“ . The Marshall News Messenger . S. A1, A2 . Abgerufen am 21. November 2022 .