Die Rezeptor-Tyrosin-Protein-Phosphatase PCP-2 (auch bekannt als PTP-pi, PTP lambda, hPTP-J, PTPRO und PTP psi) ist ein Enzym , das beim Menschen durch das Gen PTPRU kodiert wird . [ 5 ] [ 6 ] [ 7 ]
Funktion
Das von diesem Gen kodierte Protein gehört zur Familie der Protein-Tyrosin-Phosphatasen (PTP). PTPs sind als Signalmoleküle bekannt, die eine Vielzahl zellulärer Prozesse regulieren, darunter Zellwachstum, Differenzierung, Zellzyklus und onkogene Transformation . Diese PTP besitzt eine extrazelluläre Region, eine einzelne Transmembranregion und zwei tandemartige intrazelluläre katalytische Tyrosin-Phosphatase-Domänen und stellt somit eine Rezeptor-Typ-PTP (RPTP) dar. Die extrazelluläre Region enthält eine Meprin-A5-Antigen-PTPμ-Domäne (MAM), eine Ig-ähnliche Domäne und vier Fibronectin-Typ-III-ähnliche Wiederholungen und gehört somit zur Familie der R2B-RPTPs. Sie wurde von mehreren Arbeitsgruppen kloniert und erhielt verschiedene Namen, darunter PCP-2 [ 5 ] , PTP pi [ 8 ] , PTP lambda [ 9 ] , hPTP-J [ 10 ] , PTPRO [ 6 ] und PTP psi. [ 11 ] Zu den weiteren R2B-RPTPs gehören PTPRM , PTPRK und PTPRT . Die Analyse der Genomstruktur von PCP-2 legt nahe, dass es am weitesten mit den R2B-RPTPs verwandt ist. [ 12 ]
RPTPs können Phosphatgruppen von Tyrosinresten abspalten. Obwohl die R2B-Familie der RPTPs durch zwei Tyrosinphosphatase-Domänen in ihrer intrazellulären Domäne charakterisiert ist, ist üblicherweise nur eine davon katalytisch aktiv. [ 13 ] [ 14 ] Eine Punktmutationsstudie legt nahe, dass nur die erste Phosphatase-Domäne von PCP-2 katalytisch aktiv ist und β-Catenin dephosphorylieren kann. [ 15 ] Ein rekombinantes Protein mit beiden PCP-2-Phosphatase-Domänen konnte auch EGFR dephosphorylieren. [ 8 ] Wurden jedoch die beiden intrazellulären katalytischen Tyrosinphosphatase-Domänen einzeln als rekombinante Proteine exprimiert und in vitro mit dem künstlichen Substrat p-Nitrophenolphosphat (pNPP) getestet, konnten sowohl die erste als auch die zweite intrazelluläre Tyrosinphosphatase-Domäne pNPP dephosphorylieren. [ 8 ]
PTPRU als Pseudophosphatase
Die Röntgenkristallstruktur der ersten Phosphatasedomäne (D1) von PTPRU zeigt, dass mehrere divergente Sequenzen in wichtigen katalytischen Motiven zu Strukturveränderungen führen, die diese Domäne katalytisch inaktiv machen. [ 16 ] Die Phosphataseaktivität der PTPRU-D1-Phosphatasedomäne ist gegenüber einer Reihe phosphorylierter Substrate nicht nachweisbar, und die vollständige intrazelluläre Domäne von PTPRU kann pNPP nicht dephosphorylieren, was darauf hindeutet, dass PTPRU keine Phosphataseaktivität besitzt. [ 16 ] PTPRU kann daher als Pseudoenzym , in diesem Fall als Pseudophosphatase, klassifiziert werden. [ 17 ] Trotz fehlender katalytischer Aktivität kann PTPRU die Substrate der verwandten RPTP PTPRK binden. [ 16 ] Die Entfernung von PTPRU aus MCF10A-Brustepithelzellen führt zu einer verminderten Phosphorylierung des Zelladhäsionsproteins p120-Catenin , was darauf hindeutet, dass die PTPRU-Bindung Proteine sequestrieren und vor der Dephosphorylierung durch aktive Phosphatasen schützen könnte. [ 16 ]
Verordnung
Die PCP-2-mRNA wird in Jurkat-T-Lymphomzellen durch Phorbolmyristatacetat (PMA) oder Calciumionophor, Okadainsäure, den Ras-Inhibitor Manumycin und Orthovanadat reguliert. [ 10 ] [ 18 ]
Alternatives Spleißen
Es wurden vier alternativ gespleißte Transkriptvarianten beschrieben, die für unterschiedliche Proteine kodieren. [ 7 ]
Die Untersuchung von Maus-cDNA-Sequenzen in voller Länge für alternativ gespleißte Phosphatasegene identifizierte zwei neue Formen von PTPRU, die voraussichtlich zu zwei PCP-2-Spleißvarianten führen: eine gebundene Variante von PCP-2, die eine intakte extrazelluläre und Transmembrandomäne exprimiert, und eine PCP-2-Variante, der ein Signalpeptid fehlt, die aber intakte Transmembran- und zytoplasmatische Domänen kodiert. [ 19 ]
homophile Bindung
Es wurde gezeigt, dass die MAM-, Ig- und erste Fibronectin-III-Domäne von PCP-2 in vitro die Aggregation von Partikeln vermittelt. [ 9 ] PCP-2 erreicht dies durch Bindung an ein anderes PCP-2-Molekül auf einem fluoreszierenden Partikel, bekannt als homophile Bindung. PCP-2 konnte jedoch als vollständiges Protein keine Aggregation zwischen nicht-adhärenten Zellen vermitteln, was darauf hindeutet, dass PCP-2 keine homophile Adhäsion in Zellen vermittelt. [ 20 ] Die MAM- und Ig-Domänen von PCP-2 sind in der Lage, schwache Zell-Zell-Adhäsion zu vermitteln, wenn sie in das Wildtyp-PTPrho-Protein eingebaut werden. Dies zeigt, dass die MAM- und Ig-Domäne zwar schwache Zelladhäsion vermitteln können, aber weitere funktionelle Domänen innerhalb von PTPrho benötigen, um Zell-Zell-Adhäsion zu vermitteln. [ 20 ] Die Ig-Domäne des R2B-RPTP, PTPmu, reicht aus, um in vitro die Aggregation von Beads zu vermitteln. [ 21 ] Daher ist es möglich, dass die von Cheng et al. verwendeten PCP-2-Konstrukte aufgrund einer funktionellen Ig-Domäne in PCP-2 die Bead-Aggregation vermitteln konnten. [ 20 ] Eine funktionelle Ig-Domäne allein reicht jedoch nicht aus, um die Zell-Zell-Adhäsion zu vermitteln. Ähnlich wie andere Mitglieder der Subfamilie vermittelt PCP-2 keine heterophile Bindung zwischen verschiedenen R2B-RPTPs. [ 20 ]
Regulation der Cadherin-abhängigen Adhäsion
PCP-2 wurde mittels Immunhistochemie an Zell-Zell-Kontaktstellen lokalisiert und zeigte eine Kolokalisation mit E-Cadherin und Cateninen. [ 10 ] In Zelllysaten wurde eine Assoziation von PCP-2 mit β -Catenin nachgewiesen . [ 9 , 10] Es wurde gezeigt, dass PCP-2 wahrscheinlich über eine Sequenz in der juxtamembranen Domäne von PCP-2 direkt an β-Catenin bindet. [15, 22 ] β - Catenin ist ein Substrat von PCP -2. [ 15 ] Die Phosphataseaktivität von PCP-2 wirkt der β-Catenin-vermittelten Transkription entgegen. [ 23 ] Die Dephosphorylierung von β-Catenin durch PCP-2 führt unter anderem zu einer Förderung der E-Cadherin-vermittelten Zell-Zell-Adhäsion, einer Reduktion der Zellmigration [ 15 ] sowie einer Hemmung von Zellwachstum und -transformation. [ 23 ]
Rolle in der Entwicklung
Gewebeverteilung
PCP-2 wird im sich entwickelnden Nervensystem der Maus exprimiert. Genauer gesagt findet es sich zwischen den Embryonaltagen (E) 10,5 und 13,5 in der Dach- und Bodenplatte des sich entwickelnden Rückenmarks. [ 24 ] Zur gleichen Entwicklungszeit wird es in der Ventrikularzone des Telecephalons und des Hinterhirns exprimiert. [ 24 ] [ 25 ] PCP-2 wurde außerdem in der sich entwickelnden inneren Körnerschicht der Retina, im Riechepithel der Nasenhöhlen und in den Hirnhäuten nachgewiesen. [ 25 ] Im sich entwickelnden Nervensystem des Huhns wird PCP-2-mRNA in der ventralen Mittellinie des Neuralrohrs und an der Grenze zwischen Mittel- und Hinterhirn, der sogenannten Mittel-Hinterhirn-Grenze, exprimiert. [ 11 ] [ 26 ] PCP-2-mRNA ist auch in der Ventrikularzone der sich entwickelnden neuronalen Retina des Huhns nachweisbar. [ 26 ]
PCP-2 wird während der Entwicklung in nicht-neuronalen Geweben exprimiert, darunter im ersten sich bildenden Somiten des Hühnerembryos (S2) [ 11 ] , in den Linsenfasern des Auges, in der Speiseröhre, im Sklerotom, in den Nieren, in der Lunge, in den Schmelzorganen (frühe Schneide- und Backenzähne) und in den Schneckengängen des Innenohrs. [ 24 ] [ 25 ] Die PCP-2-Expression verändert sich in den meisten dieser Gewebe im Laufe der Entwicklung. [ 25 ]
PCP-2 wird in mesodiencephalen Dopaminneuronen (mdDA-Neuronen) exprimiert. [ 27 ] Seine Expression wird dort durch die koordinierte Aktivität des Orphan-Kernrezeptors Nurr1, der an den PCP-2-Promotor bindet, sowie des Homeobox-Transkriptionsfaktors Pitx3 reguliert . [ 27 ] Sowohl Nurr1 als auch Pitx3 sind für die Entwicklung von mdDA-Neuronen im Gehirn erforderlich. Dies deutet darauf hin, dass PCP-2 auch ein wichtiges nachgeschaltetes Gen für die Entwicklung von mdDA-Neuronen ist. [ 27 ]
Funktion
Mithilfe von Morpholinos zur Reduktion der PCP-2-Protein-Expression (PTP psi) in Zebrafischembryonen konnten Aerne und Ish-Horowicz zeigen, dass PCP-2 für die Somitenbildung (Körpersegmentbildung) während der Zebrafischentwicklung notwendig ist. [ 28 ] Die Reduktion der PCP-2-Expression führte zum Verlust der Somitengrenzen, zur Verkürzung der Körperachse und zur Störung der anteroposterioren Polarität innerhalb der sich entwickelnden Somiten. Schließlich wurde gezeigt, dass PCP-2 die Expression der Somitenbildungs-Uhrgene her1, her7 und delta C reduziert, was die Autoren zu der Annahme veranlasste, dass PCP-2 entweder vorgelagert oder parallel zum Notch-delta-Signalweg während der Zebrafischentwicklung beteiligt ist. [ 28 ]
PCP-2 wird in Megakaryozyten-Zelllinien exprimiert. [ 29 ] Die PCP-2-Protein-Expression in diesen Zelllinien wird durch PMA-Stimulation erhöht. [ 29 ] PCP-2 und der c-Kit-Tyrosinkinase-Rezeptor interagieren in diesen Zellen konstitutiv, und es wurde gezeigt, dass PCP-2 nach Stimulation mit dem c-Kit-Liganden SCF tyrosinphosphoryliert wird. [ 29 ] Die Behandlung von Megakaryozyten mit Antisense-Oligonukleotiden zur Reduktion der PCP-2-Protein-Expression führte zu einer signifikanten Verringerung der Proliferation von Megakaryozyten-Vorläuferzellen. [ 29 ]
Rolle bei Krebs
PCP-2 wird aufgrund seiner reduzierten Expression in Melanomgewebe und -zelllinien als Tumorsuppressorgen vermutet. [ 30 ]
Wechselwirkungen
PCP-2 interagiert mit folgenden Proteinen:
- β-Catenin [ 10 ] [ 15 ] [ 22 ]
- Adapterprotein-3 (AP3; AP3B1 , AP3B2 , AP3D1 , AP3M1 , AP3S1 , AP3S2 ) [ 31 ]
- Sortieren von Nexin 3 ( SNX3 ) [ 31 ]
- C-Kit -Rezeptor [ 29 ]
Referenzen
- ^ a b c GRCh38: Ensembl Release 89: ENSG00000060656 – Ensembl , Mai 2017
- ^ a b c GRCm38: Ensembl Release 89: ENSMUSG00000028909 – Ensembl , Mai 2017
- ^ „Human PubMed Reference:“ . National Center for Biotechnology Information, US National Library of Medicine .
- ^ „Maus PubMed-Referenz:“ . National Center for Biotechnology Information, US National Library of Medicine .
- ^ abWang H, Lian Z, Lerch MM, Chen Z, Xie W, Ullrich A (Sep 1996). "Characterization of PCP-2, a novel receptor protein tyrosine phosphatase of the MAM domain family". Oncogene. 12 (12): 2555–62. PMID 8700514.
- ^ abAvraham S, London R, Tulloch GA, Ellis M, Fu Y, Jiang S, White RA, Painter C, Steinberger AA, Avraham H (Feb 1998). "Characterization and chromosomal localization of PTPRO, a novel receptor protein tyrosine phosphatase, expressed in hematopoietic stem cells". Gene. 204 (1–2): 5–16. doi:10.1016/S0378-1119(97)00420-4. PMID 9434160.
- ^ ab"Entrez Gene: PTPRU protein tyrosine phosphatase, receptor type, U".
- ^ abcCrossland S, Smith PD, Crompton MR (1996). "Molecular cloning and characterization of PTP pi, a novel receptor-like protein-tyrosine phosphatase". Biochem J. 319 (1): 249–54. doi:10.1042/bj3190249. PMC 1217761. PMID 8870675.
- ^ abcCheng J, Wu K, Armanini M, O'Rourke N, Dowbenko D, Lasky LA (1997). "A novel protein-tyrosine phosphatase related to the homotypically adhering kappa and mu receptors". J Biol Chem. 272 (11): 7264–77. doi:10.1074/jbc.272.11.7264. PMID 9054423.
- ^ abcdeWang B, Kishihara K, Zhang D, Hara H, Nomoto K (1997). "Molecular cloning and characterization of a novel human receptor protein tyrosine phosphatase gene, hPTP-J: down-regulation of gene expression by PMA and calcium ionophore in Jurkat T lymphoma cells". Biochem Biophys Res Commun. 231 (1): 77–81. doi:10.1006/bbrc.1997.6004. PMID 9070223.
- ^ a b c Aerne B, Stoker A, Ish-Horowicz D (2003). „Die Expression der Hühnerrezeptor-Tyrosinphosphatase Psi während der Somitenbildung ist dynamisch“. Gene Expr Patterns . 3 (3): 325–9 . doi : 10.1016/S1567-133X(03)00038-3 . PMID 12799079 .
- ^ Besco J, Popesco MC, Davuluri RV, Frostholm A, Rotter A (2004). „Genomische Struktur und alternatives Spleißen von murinen R2B-Rezeptor-Protein-Tyrosinphosphatasen (PTPkappa, mu, rho und PCP-2)“ . BMC Genomics . 5 (1): 14. doi : 10.1186 / 1471-2164-5-14 . PMC 373446. PMID 15040814 .
- ^ Johnson KG, Van Vactor D (2003). „Rezeptorprotein-Tyrosinphosphatasen in der Entwicklung des Nervensystems“. Physiol Rev. 83 ( 1): 1–24 . doi : 10.1152/physrev.00016.2002 . PMID 12506125 .
- ^ Ensslen-Craig SE, Brady-Kalnay SM (2004). „Rezeptorprotein-Tyrosinphosphatasen regulieren die neuronale Entwicklung und die Axonführung“ . Dev Biol . 275 (1): 12–22 . doi : 10.1016/j.ydbio.2004.08.009 . PMID 15464569 .
- ^ a b c d e Yan HX, He YQ, Dong H, Zhang P, Zeng JZ, Cao HF, et al. (2002). „Physikalische und funktionelle Interaktion zwischen der rezeptorähnlichen Protein-Tyrosin-Phosphatase PCP-2 und β-Catenin“. Biochemistry . 41 (52): 15854–60 . doi : 10.1021/bi026095u . PMID 12501215 .
- Hay IM , Fearnley GW, Rios P, Köhn M, Sharpe HJ, Deane JE (Juni 2020). „ Der Rezeptor PTPRU ist eine redoxsensitive Pseudophosphatase“ . Nature Communications . 11 ( 1 ): 3219. Bibcode : 2020NatCo..11.3219H . doi : 10.1038/ s41467-020-17076 -w . PMC 7320164. PMID 32591542 .
- Reiterer V, Pawłowski K, Desrochers G, Pause A, Sharpe HJ, Farhan H (Oktober 2020). „Die Gesellschaft der toten Phosphatasen: Ein Überblick über die neu entdeckten Rollen von Pseudophosphatasen“. The FEBS Journal . 287 (19): 4198–4220 . doi : 10.1111/febs.15431 . hdl : 10852/85557 . PMID 32484316. S2CID 219168614 .
- ^ Wang B, Kishihara K, Zhang D, Sakamoto T, Nomoto K (1999). „Transkriptionelle Regulation des Rezeptor-Protein-Tyrosin-Phosphatase-Gens hPTP-J durch PKC-vermittelte Signalwege in Jurkat- und Molt-4-T-Lymphomzellen“. Biochim Biophys Acta . 1450 (3): 331–40 . doi : 10.1016/S0167-4889(99)00064-6 . PMID 10395944 .
- ^ Forrest AR, Taylor DF, Crowe ML, Chalk AM, Waddell NJ, Kolle G, et al. (2006). „ Genomweite Übersicht der Transkriptionskomplexität von Proteinkinasen und -phosphatasen der Maus“ . Genome Biol . 7 (1): R5. doi : 10.1186/gb-2006-7-1-r5 . PMC 1431701. PMID 16507138 .
- Becka S, Zhang P, Craig SE, Lodowski DT, Wang Z, Brady-Kalnay SM (2010). „ Charakterisierung der Adhäsionseigenschaften der Rezeptor-Tyrosinphosphatasen der Typ-IIb-Subfamilie“ . Cell Commun Adhes . 17 ( 2 ): 34–47 . doi : 10.3109/15419061.2010.487957 . PMC 3337334. PMID 20521994 .
- ^ Brady-Kalnay SM, Tonks NK (1994). „Identifizierung der homophilen Bindungsstelle der Rezeptor-Protein-Tyrosinphosphatase PTP mu“ . J Biol Chem . 269 (45): 28472–7 . doi : 10.1016/S0021-9258(18)46951-7 . PMID 7961788 .
- He Y, Yan H, Dong H, Zhang P, Tang L, Qiu X, et al. (2005). „Strukturelle Grundlage der Interaktion zwischen der Protein-Tyrosin-Phosphatase PCP-2 und β-Catenin“. Science China Life Sciences . 48 (2): 163–167 . doi : 10.1007/bf02879669 . PMID 15986889. S2CID 20799629 .
- ^ a b Yan HX, Yang W, Zhang R, Chen L, Tang L, Zhai B, et al. (2006). „Protein-Tyrosin-Phosphatase PCP-2 hemmt die β-Catenin-Signalübertragung und erhöht die E-Cadherin-abhängige Zelladhäsion“ . J Biol Chem . 281 (22): 15423–33 . doi : 10.1074/jbc.M602607200 . PMID 16574648 .
- Sommer L, Rao M, Anderson DJ (1997). „RPTP delta und die neuartige Protein-Tyrosin-Phosphatase RPTP psi werden in begrenzten Regionen des sich entwickelnden zentralen Nervensystems exprimiert“ . Dev Dyn . 208 ( 1 ) : 48–61 . doi : 10.1002/(SICI)1097-0177(199701)208:1<48::AID-AJA5>3.0.CO;2-1 . PMID 8989520 .
- Fuchs M, Wang H, Ciossek T, Chen Z, Ullrich A (1998). „ Differential expression of MAM-subfamily protein tyrosine phosphatases during mouse development“ . Mech Dev . 70 ( 1–2 ) : 91–109 . doi : 10.1016 / S0925-4773(97)00179-2 . PMID 9510027. S2CID 9560178 .
- ^ a b Badde A, Bumsted-O'Brien KM, Schulte D (2005). „Die Tyrosinphosphatase Lambda/Psi des Hühnerrezeptors (cRPTPlambda/cRPTPpsi) wird dynamisch an der Grenze zwischen Mittel- und Hinterhirn sowie in der embryonalen neuronalen Retina exprimiert“. Gene Expr Patterns . 5 (6): 786–91 . doi : 10.1016/j.modgep.2005.04.002 . PMID 15922674 .
- ^ a b c Jacobs FM, van der Linden AJ, Wang Y, von Oerthel L, Sul HS, Burbach JP, et al. (2009). „ Identifizierung von Dlk1, Ptpru und Klhl1 als neue Nurr1-Zielgene in meso-diencephalen Dopaminneuronen“ . Development . 136 (14): 2363–73 . doi : 10.1242/dev.037556 . PMC 3266485. PMID 19515692 .
- ^ a b Aerne B, Ish-Horowicz D (2004). „Rezeptor-Tyrosinphosphatase Psi ist für die Delta/Notch-Signalübertragung und die zyklische Genexpression im präsomitischen Mesoderm erforderlich“. Development . 131 ( 14): 3391–9 . doi : 10.1242/dev.01222 . PMID 15226256. S2CID 9827113 .
- ^ a b c d e Taniguchi Y, London R, Schinkmann K, Jiang S, Avraham H (1999). „Die Rezeptor-Protein-Tyrosin-Phosphatase PTP-RO wird während der Megakaryozyten-Differenzierung hochreguliert und ist mit dem c-Kit-Rezeptor assoziiert“. Blood . 94 (2): 539–49 . doi : 10.1182/blood.V94.2.539 . PMID 10397721 .
- ^ McArdle L, Rafferty M, Maelandsmo GM, Bergin O, Farr CJ, Dervan PA, et al. (2001). „Protein-Tyrosin-Phosphatase-Gene in Melanomen herunterreguliert“ . J Invest Dermatol . 117 (5): 1255–60 . doi : 10.1046/j.0022-202x.2001.01534.x . PMID 11710941 .
- Dong H, Yuan H, Jin W, Shen Y, Xu X, Wang H (2007). „Beteiligung der β3A-Untereinheit des Adapterproteins 3 am intrazellulären Transport der Rezeptor-ähnlichen Protein-Tyrosin-Phosphatase PCP-2“. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai) . 39 (7): 540–6 . doi : 10.1111 / j.1745-7270.2007.00303.x . PMID 17622474. S2CID 27621318 .
Externe Links
- PTPRU- Genposition beim Menschen im UCSC Genome Browser .
- Details zum menschlichen PTPRU- Gen im UCSC Genome Browser .