Tyrosinase ist eine Oxidase und das geschwindigkeitsbestimmende Enzym der Melaninproduktion . Das Enzym ist hauptsächlich an zwei verschiedenen Reaktionen der Melaninsynthese beteiligt, die auch als Raper-Mason-Weg bekannt sind: der Hydroxylierung eines Monophenols und der Umwandlung eines o-Diphenols in das entsprechende o-Chinon. o-Chinon durchläuft mehrere Reaktionen, bis schließlich Melanin entsteht. [ 5 ] Tyrosinase ist ein kupferhaltiges Enzym, das in pflanzlichen und tierischen Geweben vorkommt und die Bildung von Melanin und anderen Pigmenten aus Tyrosin durch Oxidation katalysiert. Es befindet sich in Melanosomen , die in den Hautmelanozyten synthetisiert werden . Beim Menschen wird das Tyrosinase-Enzym durch das TYR -Gen kodiert . [ 6 ]

Katalysierte Reaktion

Tyrosinase katalysiert die Oxidation von Phenolen wie Tyrosin und Dopamin mithilfe von Sauerstoff (O₂ ) . In Gegenwart von Brenzcatechin entsteht Benzochinon ( siehe Reaktion unten). Die vom Brenzcatechin abgespaltenen Wasserstoffatome verbinden sich mit Sauerstoff zu Wasser .

Die Substratspezifität ist bei der Tyrosinase von Säugetieren stark eingeschränkt, da sie nur die L-Form von Tyrosin oder DOPA als Substrate verwendet und nur in geringem Maße L-DOPA als Cofaktor benötigt. [ 7 ]

Aktive Website

Kristallographische Struktur einer aus Streptomyces gewonnenen Tyrosinase im Komplex mit einem sogenannten „Caddie-Protein“ [ 8 ] . In allen Modellen ist nur das Tyrosinase-Molekül dargestellt; Kupferatome sind grün und die Moleküloberfläche rot dargestellt. In den Modellen D und E sind Histidin-Aminosäuren als blaue Linien dargestellt. In Modell E ist jedes Kupferatom im aktiven Zentrum tatsächlich mit drei Histidinresten komplexiert und bildet so ein Kupferzentrum vom Typ 3. In den Modellen C und D ist zu erkennen, dass sich das aktive Zentrum dieses Proteins in einem Pillus auf der Moleküloberfläche befindet.
Monophenol-Monooxygenase
Catechol-Chinon
Kennungen
EG-Nr.1.14.18.1
CAS-Nr.9002-10-2
Datenbanken
IntEnzIntEnz-Ansicht
BRENDABRENDA-Eintrag
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MetaCycStoffwechselweg
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Tyrosinase
Dreidimensionale Struktur einer funktionellen Einheit aus Oktopus-Hämocyanin
Kennungen
SymbolTyrosinase
PfamPF00264
Pfam- ClanCL0205
InterProIPR002227
PROSITEPDOC00398
SCOP21hc2 / SCOPe / SUPFAM
Verfügbare Proteinstrukturen:
PDB  IPR002227 PF00264 ( ECOD ; PDBsum )  
AlphaFold
Gemeinsame zentrale Domäne der Tyrosinase
Kennungen
SymbolTyrosinase
PfamPF00264
InterProIPR002227
PROSITEPDOC00398
SCOP21hc2 / SCOPe / SUPFAM
Verfügbare Proteinstrukturen:
PDB  IPR002227 PF00264 ( ECOD ; PDBsum )  
AlphaFold

Die beiden Kupferatome im aktiven Zentrum der Tyrosinase-Enzyme reagieren mit Sauerstoff und bilden ein hochreaktives chemisches Zwischenprodukt, das anschließend das Substrat oxidiert . Die Aktivität der Tyrosinase ähnelt der der Catecholoxidase , einer verwandten Klasse der Kupferoxidasen . Tyrosinasen und Catecholoxidasen werden zusammenfassend als Polyphenoloxidasen bezeichnet .

Struktur

Tyrosinasen wurden aus einer Vielzahl von Pflanzen-, Tier- und Pilzarten isoliert und untersucht. Tyrosinasen verschiedener Spezies unterscheiden sich hinsichtlich ihrer Struktur, Gewebeverteilung und zellulären Lokalisation. [ 9 ] Es wurde keine für alle Spezies einheitliche Tyrosinase-Proteinstruktur gefunden. [ 10 ] Die in Pflanzen-, Tier- und Pilzgewebe vorkommenden Enzyme unterscheiden sich häufig in ihrer Primärstruktur, Größe, ihrem Glykosylierungsmuster und ihren Aktivierungseigenschaften. Allen Tyrosinasen ist jedoch ein zweikerniges Kupferzentrum vom Typ 3 in ihrem aktiven Zentrum gemeinsam . Hier sind jeweils zwei Kupferatome mit drei Histidinresten koordiniert .

Dies ist eine Alignment-Struktur, die nur die konservierten Bereiche der Proteinnukleotidsequenzen von Fröschen (NCBI GenBank-Zugangsnummern CAR95491 , CAJ82935 , BAA02077 , BAV78831 und AAC17168 ), Schlangen (NCBI GenBank-Zugangsnummern BBC55580 , XP032076040 und BBC55647 ) und Menschen (GenBank-Zugangsnummer AAA61242 ) zeigt. Die Sequenzierung erfolgte mit Clustal Omega. (Hinweis: (*) kennzeichnet einen konservierten Bereich, (.) einen stärker konservierten und (:) einen weniger konservierten Bereich.)

Anlage

In vivo werden pflanzliche PPOs als etwa 64–68 kDa große Proteine ​​exprimiert,die aus drei Domänen bestehen: einem chloroplastischen Transitpeptid ( das ein etwa 4–9 kDa großes Thylakoid-Signalpeptid enthält ) , einer katalytisch aktiven Domäne (etwa 37–42 kDa), die das zweikernige Kupferzentrum enthält , und einer C-terminalen Domäne (etwa 15–19 kDa), die das aktive Zentrum abschirmt . [ 11 ]

Säugetier

Die Tyrosinase von Säugetieren ist ein einzelnes, die Membran durchspannendes Transmembranprotein . [ 12 ] Beim Menschen wird die Tyrosinase in Melanosomen sortiert [ 13 ] , und die katalytisch aktive Domäne des Proteins befindet sich innerhalb der Melanosomen. Nur ein kleiner, enzymatisch unwichtiger Teil des Proteins ragt in das Zytoplasma des Melanozyten hinein .

Im Gegensatz zur Tyrosinase von Pilzen ist die humane Tyrosinase ein membrangebundenes Glykoprotein und hat einen Kohlenhydratgehalt von 13 %. [ 14 ]

Das abgeleitete TYR-Allel (rs2733832) ist mit einer helleren Hautpigmentierung in menschlichen Populationen assoziiert. Es ist am häufigsten in Europa anzutreffen , kommt aber auch in geringeren bis mittleren Häufigkeiten in Zentralasien , dem Nahen Osten , Nordafrika sowie bei den San- und Mbuti-Pygmäen vor . [ 15 ]

Bakterien

In Mooren wird angenommen, dass bakterielle Tyrosinasen als wichtige Regulatoren der Kohlenstoffspeicherung fungieren, indem sie phenolische Verbindungen entfernen, welche den Abbau von organischem Kohlenstoff hemmen . [ 16 ]

Pilz

Beim Pilz Neurospora crassa wurden in verschiedenen Stämmen vier unterschiedliche Tyrosinaseformen unterschieden. [ 17 ] In jedem Stamm wurde nur eine strukturbestimmende genetische Region für das Enzym gefunden.

Genregulation

Das Gen für Tyrosinase wird durch den mit Mikrophthalmie assoziierten Transkriptionsfaktor (MITF) reguliert. [ 18 ] [ 19 ]

Der Raper-Mason-Weg (Melanogenese-Weg) veranschaulicht die Schritte der Melanin-Synthese [ 20 ] . DHI – 5,6-Dihydroxyindol, DHICA – 5,6-Dihydroxyphenylalanin, GGT – Gamma-Glutamyltransferase, GST – Glutathion-S-Transferase; L-Dopa – Levo-Dopa, TRP-2 – Tyrosinase-verwandtes Protein 2
Ein repräsentatives phylogenetisches Baumdiagramm von Tyrosinase-Proteinen. Tyrosinase-Sequenzen von zehn Wirbeltierarten (Gattungen: Ambystoma, Xenopus, Homo, Elaphe, Thamnophis, Bufo, Rugosa und Rana) wurden analysiert. Die multiplen Sequenzalignments wurden mit dem Programm CLUSTAL W (Version 1.7) erstellt, und die phylogenetischen Bäume wurden mittels der Neighbour-Joining-Methode ohne Distanzkorrektur konstruiert. Ambystoma und Xenopus bilden daher keinen Cluster mit anderen Amphibien. Äste und Knoten wurden nach einheitlichen Mustern gezeichnet.

Klinische Bedeutung

Eine Mutation im Tyrosinase-Gen, die zu einer verminderten Tyrosinase-Produktion führt, verursacht okulokutanen Albinismus Typ I , eine Erbkrankheit, von der einer von 20.000 Menschen betroffen ist. [ 21 ]

Die Tyrosinaseaktivität ist von großer Bedeutung. Ist sie während der Melaninbildung unkontrolliert , führt sie zu einer erhöhten Melaninproduktion. Die Senkung der Tyrosinaseaktivität ist ein Ziel der Forschung zur Verbesserung oder Vorbeugung von Hauterkrankungen, die mit Hyperpigmentierung einhergehen , wie beispielsweise Melasma und Altersflecken . [ 22 ]

Verschiedene Polyphenole, darunter Flavonoide oder Stilbenoide , Substratanaloga, Radikalfänger und Kupferchelatoren, sind dafür bekannt, die Tyrosinase zu hemmen. [ 23 ] Daher konzentrieren sich die medizinische und kosmetische Industrie auf die Forschung an Tyrosinasehemmern zur Behandlung von Hauterkrankungen. [ 5 ]

Inhibitoren

Bekannte Tyrosinase-Inhibitoren sind folgende: [ 24 ]

Genetik

Obwohl Albinismus häufig vorkommt, gibt es nur wenige Studien zu den genetischen Mutationen in den Tyrosinasegenen von Tieren. Eine davon befasste sich mit Bubalus bubalis (Wasserbüffel). Die Tyrosinase-mRNA-Sequenz des Wildtyps von B. bubalis umfasst 1958 Basenpaare (bp) mit einem offenen Leserahmen (ORF) von 1593 bp Länge, was für 530 Aminosäuren kodiert. Das Tyrosinasegen des Albino -B. bubalis (GenBank JN_887463) ist hingegen an Position 477 verkürzt. Ursache hierfür ist eine Punktmutation im Nukleotid 1431, die ein Tryptophan (TGG) in ein Stoppcodon (TGA) umwandelt , wodurch das Tyrosinasegen verkürzt und inaktiv wird. [ 25 ] Andere Albinos weisen Punktmutationen auf, die die Tyrosinase anscheinend inaktivieren, ohne dass es zu einer Verkürzung kommt (siehe Tabelle und Abbildung für Beispiele).

Spezies Gebräuchlicher Name Aminosäuremutation GenBank Uniprot-ID
Bubalus bubalisWasserbüffel W477 -> Stoppcodon JN_887462 J7FBF2
Pelophylax nigromaculatusTeichfrosch Löschung eines K228 Q04604
Glandirana rugosaRunzeliger Frosch G376 -> D376 A0A1I9FZH0
Fejervarya kawamuraiReis-Frosch G57 -> R57 A0A1E1G7U0
Mutationen im Tyrosinase-Gen, die bei Tieren Albinismus verursachen. Farbige Kästchen kennzeichnen Bereiche im Protein, die von einem der fünf Exons kodiert werden (siehe Abbildung der Genstruktur). Die Positionen beziehen sich auf die Aminosäurepositionen im Protein der jeweiligen Spezies. Modifiziert nach Miura et al.

Obwohl einige Studien zu den Genomdaten des Tyrosinase-Gens vorliegen, gibt es nur wenige Untersuchungen zu Mutationen bei Albino- Amphibien . Miura et al. (2018) untersuchten die Aminosäuremutationen im Tyrosinase-Gen bei drei Albino- Fröschen : Pelophylax nigromaculatus (Teichfrosch), Glandirana rugosa (Runzelfrosch) und Fejervarya kawamurai (Reisfrosch). Insgesamt wurden fünf verschiedene Populationen untersucht, darunter drei von P. nigromaculatus sowie je eine von G. rugosa und F. kawamurai . In zwei der drei Populationen von P. nigromaculatus trat eine Leserasterverschiebung durch die Insertion eines Thymins in die Exons 1 und 3 auf. Der dritten Population fehlten drei Nukleotide, die für Lysin in Exon 1 kodieren. Die Population von G. rugosa wies eine Missense-Mutation auf, bei der Glycin durch Asparaginsäure ersetzt wurde , und auch die Mutation von F. kawamurai führte zu einem Aminosäureaustausch von Glycin zu Arginin . Die Mutationen bei G. rugosa und F. kawamurai betreffen die Exons 1 und 3. Die Mutationen der dritten Population von P. nigromaculatus sowie die Mutationen von G. rugosa und F. kawamurai liegen in Bereichen, die bei Wirbeltieren hochkonserviert sind und zu einem dysfunktionalen Tyrosinase-Gen führen könnten. [ 26 ]

Substituierte Aminosäuren der Tyrosinase in Albinofröschen und entsprechende Aminosäuren in anderen Wirbeltierarten (Miura et al., 2018). kW steht für den Wildtyp des Reisfrosches Kawamurai , kA für den Albinotyp Kawamurai, rW für den Wildtyp Rugosa, rA für den Albinotyp Rugosa , nW für den Wildtyp Nigromaculatus und nA H für den in Hiroshima gesammelten Albinotyp Nigromaculatus. Die Zahlen außerhalb der Klammern geben die Aminosäureposition der mutierten Spezies an, die Zahl in den Klammern die entsprechende Aminosäureposition in der menschlichen Sequenz. (Miura et al. 2018) [ 26 ]
Dies ist eine schematische Darstellung der Intron-Exon-Struktur des Tyrosinase-Gens (TYP) beim Menschen (ClinVar: NM_000372 ). [ 27 ] Offene und geschlossene Kästchen repräsentieren die protein-kodierenden bzw. die nicht-translatierten Bereiche der Exons. Die Exons sind nummeriert. Die Intronlängen sind durch kleine Zahlen (in Basenpaaren) angegeben.

Evolution

ConSurf verwendet neun Farben von Türkis über Weiß bis Burgunderrot , um die Erhaltungsgrade von variabel bis gut erhalten darzustellen. Rechts ist ein alternatives Farbschema abgebildet, das von der früheren (mittlerweile veralteten) MSA3D-Software von ProteinExplorer inspiriert ist (in der die Grade 4, 5 und 6 dieselbe Farbe verwenden).

Tyrosinase ist ein hochkonserviertes Protein in Tieren und entstand offenbar bereits in Bakterien . Das Tyrosinase-verwandte Protein (Tyrp1) und die Dopachrom- Tautomerase (Dtc) kodieren für Proteine, die an der Melanin- Synthese beteiligt sind und gemeinsame regulatorische Elemente der Exon/Intron -Struktur darstellen. Die Entwicklung der drei Arten von Pigmentzellen der Wirbeltiere verläuft zwar unterschiedlich, konvergiert aber an einem bestimmten Punkt, um die Expression von Mitgliedern der Tyrosinase- Familie zur Produktion von Melanin-Pigmenten zu ermöglichen. [ 28 ] Gene der Tyrosinase-Familie spielen eine wichtige Rolle in der Evolution , Genetik und Entwicklungsbiologie von Pigmentzellen sowie beim Verständnis menschlicher Erkrankungen, die mit Defekten in ihrer Synthese, Regulation oder Funktion einhergehen. Drei Arten von Melanin- produzierenden Pigmentzellen sind seit embryonalem Ursprung bekannt: Zellen aus der Neuralleiste , dem Neuralrohr und der Zirbeldrüse . Alle drei besitzen die Fähigkeit, Melanin-Pigmente zu produzieren. Ihre Biosynthese wird durch evolutionär konservierte Enzyme der Tyrosinase-Familie (Tyr, Tyr1 und Tyr2), auch DOPAchrom- Tautomerase (dct) genannt, gesteuert. Tyr spielt dabei eine wichtige Rolle bei der Melaninproduktion. Sequenzierte Genome verschiedener Taxa sind für die detaillierte Evolutionsanalyse in der vorliegenden Studie jedoch unerlässlich. [ 29 ] Auch die Kupferproteine ​​vom Typ 3 erfüllen verschiedene biologische Funktionen , darunter Pigmentbildung, angeborene Immunität und Sauerstofftransport. Die kombinierte genetisch -phylogenetische und strukturelle Analyse ergab, dass das ursprüngliche Kupferprotein vom Typ 3 aus einem einzigen Peptid bestand und der α- Unterklasse zugeordnet wurde . Das Gen des Vorfahrenproteins erfuhr zwei Duplikationen: eine vor der Aufspaltung unbekannter eukaryotischer Linien und eine zweite vor der Diversifizierung . Die erste Duplikation führte zur cytosolischen Form ( β ), die zweite zur membrangebundenen Form ( Γ ). Der Strukturvergleich ergab, dass die aktiven Zentren der α- und γ- Formen von aliphatischen Aminosäuren bedeckt sind undDie β- Form ist mit aromatischen Resten bedeckt. Die Evolution dieser Genfamilie stellt somit die Abstammungslinie vielzelliger Eukaryoten dar , bedingt durch den Verlust einer oder mehrerer dieser drei Unterklassen und die linienspezifische Expansion einer oder beider der verbleibenden Unterklassen . [ 30 ] Die genomisch konservierten Nukleotidsequenzen der Tyrosinase innerhalb der Wirbeltierfamilie (Frösche, Schlangen und Menschen) legen nahe, dass sie sich aus einem einzigen Vorläufergen entwickelt hat. Die Duplikation und Mutation dieses Gens ist wahrscheinlich für die Entstehung eines Tyrosinase-verwandten Gens verantwortlich . [ 31 ]

Anwendungen

In der Lebensmittelindustrie

In der Lebensmittelindustrie ist die Hemmung der Tyrosinase erwünscht, da Tyrosinase die Oxidation von in Obst und Gemüse vorkommenden phenolischen Verbindungen zu Chinonen katalysiert . Dies führt zu einem unerwünschten Geschmack und einer unerwünschten Farbe und verringert zudem die Verfügbarkeit bestimmter essentieller Aminosäuren sowie die Verdaulichkeit der Produkte. Daher werden hochwirksame Tyrosinasehemmer auch in der Landwirtschaft und der Lebensmittelindustrie benötigt. [ 14 ] Bekannte Tyrosinasehemmer sind Kojisäure , [ 32 ] Tropolon , [ 33 ] Cumarine , [ 34 ] Vanillinsäure , Vanillin und Vanillinsäurealkohol . [ 35 ]

In der Kosmetikindustrie

In verschiedenen asiatischen Kulturen wird ein hellerer Hautton mit Jugend und Schönheit assoziiert. Aktuelle Forschung von Kosmetikunternehmen konzentriert sich auf die Entwicklung neuartiger Aufhellungsmittel, die die Tyrosinaseaktivität selektiv hemmen, um Hyperpigmentierung zu reduzieren und gleichzeitig die Zytotoxizität für gesunde Melanozyten zu vermeiden . [ 36 ] Traditionelle pharmakologische Wirkstoffe wie Kortikosteroide , Hydrochinon und Aminonumericchlorid hellen die Haut durch die Hemmung der Melanozytenreifung auf. [ 37 ] Diese Wirkstoffe sind jedoch mit Nebenwirkungen verbunden. Kosmetikunternehmen konzentrieren sich daher auf die Entwicklung neuartiger Aufhellungsmittel, die die Tyrosinaseaktivität selektiv hemmen, um Hyperpigmentierung zu reduzieren und gleichzeitig die Zytotoxizität für Melanozyten zu vermeiden, da die Tyrosinase der geschwindigkeitsbestimmende Schritt der Melanogenese ist.

Bei Insekten

Tyrosinase erfüllt bei Insekten vielfältige Funktionen, darunter Wundheilung, Sklerotisierung , Melanin-Synthese und Parasiteneinkapselung. Daher ist sie ein wichtiges Enzym und Teil des Abwehrmechanismus von Insekten. Einige Insektizide zielen darauf ab, die Tyrosinase zu hemmen. [ 14 ]

In von Muschelleim inspirierten Polymeren

Die Tyrosinase-aktivierte Polymerisation von Peptiden mit Cystein- und Tyrosinresten führt zu Polymeren , die an Muschelkleber erinnern. Die Tyrosinreste werden enzymatisch zu Dopaquinonen oxidiert , an die Thiolgruppen des Cysteins über eine intermolekulare Michael-Addition binden können . Die resultierenden Polymere adsorbieren mit hoher Adhäsionsenergie stark an verschiedenen Oberflächen . [ 38 ] [ 39 ]

Referenzen

  1. ^ a b c GRCh38: Ensembl Release 89: ENSG00000077498 – Ensembl , Mai 2017
  2. ^ a b c GRCm38: Ensembl Release 89: ENSMUSG00000004651 – Ensembl , Mai 2017
  3. ^ „Human PubMed Reference:“ . National Center for Biotechnology Information, US National Library of Medicine .
  4. ^ „Maus PubMed-Referenz:“ . National Center for Biotechnology Information, US National Library of Medicine .
  5. ^ a b Kumar CM, Sathisha UV, Dharmesh S, Rao AG, Singh SA (März 2011). „Wechselwirkung von Sesamol (3,4-Methylendioxyphenol) mit Tyrosinase und dessen Einfluss auf die Melanin-Synthese“. Biochimie . 93 (3): 562–9 . doi : 10.1016/j.biochi.2010.11.014 . PMID 21144881 . 
  6. ^ Barton DE, Kwon BS, Francke U (Juli 1988). „Das auf Chromosom 11 (q14–q21) kartierte humane Tyrosinase-Gen definiert eine zweite Homologieregion mit dem Maus-Chromosom 7“. Genomics . 3 (1): 17–24 . doi : 10.1016/0888-7543(88)90153-X . PMID 3146546 . 
  7. ^ Anhörung von VJ, Ekel TM, Montague PM, Nicholson JM (Februar 1980). „Säugetiertyrosinase. Stöchiometrie und Messung von Reaktionsprodukten“. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Enzymologie . 611 (2): 251– 68. doi : 10.1016/0005-2744(80)90061-3 . PMID 6766744 . 
  8. ^ PDB : 1WX3 ​; Matoba Y, Kumagai T, Yamamoto A, Yoshitsu H, Sugiyama M (2006). „Kristallographischer Nachweis der Flexibilität des zweikernigen Kupferzentrums der Tyrosinase während der Katalyse“ . J. Biol. Chem . 281 (13): 8981–8990 . doi : 10.1074/jbc.M509785200 . PMID 16436386 . 
  9. ^ Mayer AM (Nov. 2006). „Polyphenoloxidasen in Pflanzen und Pilzen: Auf dem Weg in die Zukunft? Ein Überblick“. Phytochemistry . 67 (21): 2318–31 . Bibcode : 2006PChem..67.2318M . doi : 10.1016/j.phytochem.2006.08.006 . PMID 16973188 . 
  10. ^ Jaenicke E, Decker H (Apr 2003). „Tyrosinasen aus Krustentieren bilden Hexamere“ . The Biochemical Journal . 371 (Pt 2): 515–23 . doi : 10.1042/BJ20021058 . PMC 1223273. PMID 12466021 .  
  11. ^ Mayer AM (November 2006). „Polyphenoloxidasen in Pflanzen und Pilzen: Auf dem Weg in die Zukunft? Ein Überblick“. Phytochemistry . 67 (21): 2318–31 . Bibcode : 2006PChem..67.2318M . doi : 10.1016/j.phytochem.2006.08.006 . PMID 16973188 . 
  12. ^ Kwon BS, Haq AK, Pomerantz SH, Halaban R (Nov. 1987). „Isolierung und Sequenzierung eines cDNA-Klons für humane Tyrosinase, der am Maus-c-Albino-Locus kartiert“ . Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America . 84 (21): 7473–7477 . Bibcode : 1987PNAS...84.7473K . doi : 10.1073 / pnas.84.21.7473 . PMC 299318. PMID 2823263 .  
  13. ^ Theos AC, Tenza D, Martina JA, Hurbain I, Peden AA, Sviderskaya EV, Stewart A, Robinson MS, Bennett DC, Cutler DF, Bonifacino JS, Marks MS, Raposo G (Nov. 2005). „Funktionen der Adapterproteine ​​(AP)-3 und AP-1 beim Tyrosinase-Sorting von Endosomen zu Melanosomen“ . Molecular Biology of the Cell . 16 (11): 5356–72 . doi : 10.1091/mbc.E05-07-0626 . PMC 1266432. PMID 16162817 .  
  14. ^ a b c Kim YJ, Uyama H (Aug 2005). „Tyrosinase-Inhibitoren aus natürlichen und synthetischen Quellen: Struktur, Hemmmechanismus und Zukunftsperspektiven“ . Cellular and Molecular Life Sciences . 62 (15): 1707–23 . doi : 10.1007/ s00018-005-5054 -y . PMC 11139184. PMID 15968468. S2CID 8280251 .   
  15. ^ „Allelhäufigkeit für die polymorphe Stelle: rs2733832“ . ALFRED. Archiviert vom Original am 20. August 2016. Abgerufen am 23. Juni 2016 .
  16. ^ Panis F, Krachler RF, Krachler R, Rompel A (Juni 2021). „Expression, Reinigung und Charakterisierung einer gut angepassten Tyrosinase aus Torfmooren, identifiziert durch partielle Gemeinschaftsanalyse“ . Environmental Science & Technology . 55 (16): 11445–11454 . Bibcode : 2021EnST...5511445P . doi : 10.1021/acs.est.1c02514 . PMC 8375020. PMID 34156250 .  
  17. ^ HOROWITZ NH, FLING M, MACLEOD H, SUEOKA N (August 1961). „Eine genetische Studie zweier neuer Strukturformen der Tyrosinase in Neurospora“ . Genetics . 46 ( 8): 1015–24 . doi : 10.1093/genetics/46.8.1015 . PMC 1210246. PMID 13715943 .  
  18. ^ Hou L, Panthier JJ, Arnheiter H (Dez. 2000). „Signalgebung und transkriptionelle Regulation in der aus der Neuralleiste stammenden Melanozytenlinie: Interaktionen zwischen KIT und MITF“. Development . 127 (24): 5379–89 . doi : 10.1242/dev.127.24.5379 . PMID 11076759 . 
  19. ^ Hoek KS, Schlegel NC, Eichhoff OM, Widmer DS, Praetorius C, Einarsson SO, Valgeirsdottir S, Bergsteinsdottir K, Schepsky A, Dummer R, Steingrimsson E (Dez. 2008). „Neue MITF-Zielstrukturen identifiziert mittels einer zweistufigen DNA-Microarray-Strategie“ . Pigment Cell & Melanoma Research . 21 (6): 665–76 . doi : 10.1111/j.1755-148X.2008.00505.x . PMID 19067971 . 
  20. ^ Eller MS, Ostrom K, Gilchrest BA (1996). „DNA-Schäden verstärken die Melanogenese“ . Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America . 93 (3): 1087–1092 . Bibcode : 1996PNAS...93.1087E . doi : 10.1073 / pnas.93.3.1087 . PMC 40035. PMID 8577719 .  
  21. ^ Witkop CJ (Okt. 1979). „Albinismus: Hämatologische Speicherkrankheit, Anfälligkeit für Hautkrebs und optische neuronale Defekte, die allen Formen des okulokutanen und okulären Albinismus gemeinsam sind“. The Alabama Journal of Medical Sciences . 16 (4): 327–330 . PMID 546241 . 
  22. ^ Ando H, Kondoh H, Ichihashi M, Hearing VJ (Apr 2007). „Ansätze zur Identifizierung von Inhibitoren der Melaninbiosynthese über die Qualitätskontrolle der Tyrosinase“ . The Journal of Investigative Dermatology . 127 (4): 751–61 . doi : 10.1038/sj.jid.5700683 . PMID 17218941 . 
  23. ^ Chang TS (Juni 2009). „ Aktualisierte Übersicht über Tyrosinase-Inhibitoren“ . International Journal of Molecular Sciences . 10 (6): 2440–75 . doi : 10.3390/ijms10062440 . PMC 2705500. PMID 19582213 .  
  24. ^ Pillaiyar T, Manickam M, Namasivayam V (Dezember 2017). „Hautaufhellende Mittel: Medizinisch-chemische Perspektive von Tyrosinasehemmern“ . Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry . 32 (1): 403–425 . doi : 10.1080/14756366.2016.1256882 . PMC 6010116. PMID 28097901 .  
  25. ^ Damé, Maria Cecília Florisbal; Xavier, Gildenor Medeiros; Oliveira-Filho, José Paes; Borges, Alexandre Secorun; Oliveira, Henrique Nunes; Riet-Correa, Franklin; Schild, Ana Lucia (20.07.2012). „Eine Nonsens-Mutation im Tyrosinase-Gen verursacht Albinismus bei Wasserbüffeln“ . BMC-Genetik . 13 62. doi : 10.1186/1471-2156-13-62 . ISSN 1471-2156 . PMC 3411452 . PMID 22817390 .   
  26. ^ a b Miura, Ikuo; Tagami, Masataka; Fujitani, Takeshi; Ogata, Mitsuaki (10.02.2018). „Spontane Tyrosinase-Mutationen bei Albinos dreier Wildfroscharten identifiziert“ . Genes & Genetic Systems . 92 (4): 189–196 . doi : 10.1266/ggs.16-00061 . ISSN 1880-5779 . PMID 28674275 .  
  27. ^ Kim, Young-Hyun; Park, Sang-Je; Choe, Se-Hee; Lee, Ja-Rang; Cho, Hyeon-Mu; Kim, Sun-Uk; Kim, Ji-Su; Sim, Bo-Woong; Song, Bong-Seok; Lee, Youngjeon; Jin, Yeung Bae; Hong, Jung-Joo; Jeong, Kang-Jin; Kang, Philyong; Baek, Seung-Ho; Lee, Sang-Rae; Huh, Jae-Won; Chang, Kyu-Tae (2017). „Identifizierung und Charakterisierung des Tyrosinase-Gens (TYR) und seiner Transkriptvarianten (TYR_1 und TYR_2) beim Krabbenmakaken (Macaca fascicularis)“ . Gene . 630 : 21– 27. doi : 10.1016/j.gene.2017.07.047 . PMID 28756020 . 
  28. ^ Agnes Camacho-Hubner, Christelle Richard, Friedrich Beermann (20. Februar 2022). „Genomische Struktur und evolutionäre Konservierung der Tyrosinase-Genfamilie von Kugelfischen“. Gene . 285 ( 1–2 ): 59–68 . doi : 10.1016/s0378-1119(02)00411-0 . PMID 12039032 . {{cite journal}}: CS1 Wartung: Mehrere Namen: Autorenliste ( Link )
  29. ^ Rosaria Esposito, Salvatore D'Aniello, Paola Squarzoni, Maria Rosa Pezzotti, Filomena Ristoratore und Antonietta Spagnuolo (2012). „Neue Einblicke in die Evolution der metazoischen Tyrosinase-Genfamilie“ . PLUS EINS . 7 (4) e35731. Bibcode : 2012PLoSO...735731E . doi : 10.1371/journal.pone.0035731 . PMC 3334994 . PMID 22536431 .  {{cite journal}}: CS1 Wartung: Mehrere Namen: Autorenliste ( Link )
  30. ^ Aguilera, Felipe; McDougall, Carmel; Degnan, Bernard M. (2013-05-01). „Ursprung, Evolution und Klassifizierung von Kupferproteinen des Typs 3: Stammespezifische Genexpansionen und -verluste innerhalb der Metazoen“ . BMC Evolutionary Biology . 13 (1): 96. Bibcode : 2013BMCEE..13...96A . doi : 10.1186/1471-2148-13-96 . ISSN 1471-2148 . PMC 3658974. PMID 23634722 .   
  31. ^ F. Murisier und F. Beermann (2006). „Genetik der Pigmentzellen: Erkenntnisse aus der Tyrosinase-Genfamilie“. Histology and Histopathology . 21 (5): 567–578 . doi : 10.14670/HH-21.567 . PMID 16493586 . 
  32. ^ Mendes E, Perry Mde J, Francisco AP (Mai 2014). „Design und Entdeckung von Tyrosinase-Inhibitoren aus Pilzen und deren therapeutische Anwendungen“. Expert Opinion on Drug Discovery . 9 (5): 533–54 . doi : 10.1517/17460441.2014.907789 . PMID 24708040. S2CID 12589166 .  
  33. ^ Rescigno A, Sollai F, Pisu B, Rinaldi A, Sanjust E (Aug 2002). „Tyrosinase-Hemmung: Allgemeine und angewandte Aspekte“ . Journal of Enzyme Inhibition and Medicinal Chemistry . 17 (4): 207–18 . doi : 10.1080/14756360210000010923 . PMID 12530473 . 
  34. Sollai F, Zucca P, Sanjust E, Steri D, Rescigno A (Dezember 2008). „Umbelliferon und Esculetin: Inhibitoren oder Substrate für Polyphenoloxidasen?“ Biological & Pharmaceutical Bulletin . 31 ( 12): 2187–93 . doi : 10.1248/bpb.31.2187 . hdl : 11584/105440 . PMID 19043197 . 
  35. ^ Rescigno A, Casañola-Martin GM, Sanjust E, Zucca P, Marrero-Ponce Y (März 2011). „Vanilloidderivate als Tyrosinaseinhibitoren: Ergebnisse virtueller Screening-basierter QSAR-Modelle“. Drug Testing and Analysis . 3 (3): 176–81 . doi : 10.1002/dta.187 . PMID 21125547 . 
  36. ^ Qian, W., Liu, W., Zhu, D., Cao, Y., Tang, A., Gong, G., Su, H."Natürliche Hautaufhellungsmittel zur Behandlung der Melanogenese (Übersicht)". Experimental and Therapeutic Medicine 20.1 (2020): 173-185.
  37. ^ Lajis AF, Ariff AB (2019). „Entdeckung neuer depigmentierender Verbindungen und deren Wirksamkeit bei der Behandlung von Hyperpigmentierung: Ergebnisse einer In-vitro-Studie“. J Cosmet Dermatol . 18 : 703–727 .
  38. ^ Horsch J, Wilke P, Pretzler M, Seuss M, Melnyk I, Remmler D, et al. (November 2018). „Polymerisierung wie bei Muscheln: Synthetische Muschelfußproteine ​​und resistente Klebstoffe“ . Angewandte Chemie . 57 (48): 15728–15732 . doi : 10.1002/anie.201809587 . PMC 6282983. PMID 30246912 .  
  39. ^ Arias S, Amini S, Horsch J, Pretzler M, Rompel A, Melnyk I, et al. (Oktober 2020). „Auf dem Weg zu künstlichen Muschelklebstoffproteinen: Differenzierung von Sequenzmodulen für Adhäsion und schaltbare Kohäsion“ . Angewandte Chemie . 59 (42): 18495–18499 . doi : 10.1002/anie.202008515 . PMC 7590116. PMID 32596967 .